VáclavBurle

Sírovec žlutooranžový (Laetiporus sulphureus), je dřevokazná houba z čeledi chorošovitých (Polyporaceae), které je na tomto blogu věnováno hodně pozornosti (http://burle.blog.cz/rubrika/sirovec-zlutooranzovy). Hodně pozornosti jí věnuje i současná věda, která v ní vidí významný zdroj mnoha bioaktivních látek s potenciálním využitím v mnoha oborech lidské činnosti, ale zejména v medicíně (Wang et al., 2017). O velkém zájmu o tuto houbu svědčí fakt, že jen v medicínské databázi PubMed bylo k dnešnímu dni 91 odborných sdělení a v databázi Google Scholar neuvěřitelných 5330 sdělení.

Je s podivem, jak z původního celosvětového škůdce ovocných stromů (Ota et al., 2009) (http://burle.blog.cz/1611/sirovec-oranzovy-informace-stara-150-let) způsobujících hnědou hnilobu se stala vyhledávaná medicinální houba (Olenikov et al., 2008, 2009b; Radic et al., 2009; Pleszczyńska et al., 2010). o jejíž umělé pěstování je ve světě velký zájem (Pleszczyńska et al., 2013). Sírovec žlutooranžový je kosmopolitní druh houby, což znamená, že je rozšířena po celém světě a v různých zemích je na ni různě pohlíženo: jako na škůdce stromů, jako na exotickou potravinu, jako na medicinální houbu či jako na zdroj užitečných bioaktivních látek (Karaman et al., 2010).

Z významných biaktivních látek sírovce žlutooranžového stojí za zmínku zejména: Cytotoxické a protinádorové látky - benzofuranový glyykosid masutakesid I, acetylenická kyselina masutaková, egonol, demethoxyegonol, egonol-glukosid a egonol-gentiobiosid (Yoshikawa et al., 2001), laetiribin (Lear et al., 2009), kyselina mykofenolová a její deriváty (Fan et al., 2014).

Protizánětlivé látky - zejména kyselina eburiková (Saba et al., 2015), která při perorálním podání chrání žaludeční sliznici před žaludečními vředy (Wang et al., 2015, 2017). Antimikrobiální látky (Ershova et al., 2003). Lektiny - s hemolytickým účinkem (Tateno et al., 2003; Mancheño et al., 2004, 2005, 2010; Angulo et al., 2011). Polysacharidy - typů glukanů (Alquini et al., 2004; Hwang et al., 2008; Olenikov et al., 2009a,b; Jayasooriya et al., 2011; Seo et al., 2011; Wiater et al., 2011). Triterpeny - lanostanového typu (León et al., 2004). Seskviterpeny - drimanového (He et al., 2015a; On et al., 2015), lanostanového (Yin et al., 2015) a illudinového typu (He et al., 2015b). Polyenové pigmenty - laetiporové kyseliny (Davoli et al., 2005). Enzymy - termostabilní xylanáza (Lee et al., 2009) a termostabilní beta-1,3-1,4-glukanáza (Hong et al., 2009). Polynenasycené mastné kyseliny - a jejich lipidy (Sinanoglou et al., 2015).

V současné době je na sírovec žlutooranžový pohlíženo jako na funkční potravinu (Zhao et al., 2017) a je snaha začít jej pěstovat průmyslově na umělých substrátech (Pleszczyńska et al., 2013), podobně jako např. žampiony. Pokud jste sírovec žlutooranžový někdy drželi v ruce a očichávali jej, nebo jste z něj dokonce připravovali nějaký pokrm, nemohli jste si nevšimnout zvláštní vůně, kterou houba vydává. Vůně je způsobena těkavými látkami, které sírovec syntetizuje ve svých tkáních a které útočí na naše čichové buňky. Skupina francouzských a polských vědců (Rapior et al., 2000) pomocí citlivých analytických metod (plynová chromatoghrafie a hmotová spektrometrie) zjistila, že těch těkavých látek je celkem 26 a nejvíce jsou zastoupeny: aldehyd kyseliny 3-methylskořicové (27,5 %), 2-fenylethanol (6,4 %), aldehyd kyseliny benzoové (4,0 %) a N-fenylethylformamid (3,8 %). Srbští autoři (Petrović et al., 2013) našli v plodnicích sírovce žlutooranžového, rostoucího na vrbách, dokonce 56 různých těkavých látek. Ve skutečnosti těch látek může být ještě mnohem více, ale některé jsou zřejmě přítomny v tak nízkých koncentracích, že je současná analytická technika neodhalí. Nelze také vyloučit, že spektrum těkavých látek se může lišit u hub z různých lokalit.

Alquini G, Carbonero ER, Rosado FR, Cosentino C, Iacomini M. Polysaccharides from the fruit bodies of the basidiomycete Laetiporus sulphureus (Bull.: Fr.) Murr. FEMS Microbiol Lett. 2004; 230(1): 47-52.

Angulo I, Acebrón I, de las Rivas B, Muñoz R, Rodríguez-Crespo I, Menéndez M, García P, Tateno H, Goldstein IJ, Pérez-Agote B, Mancheño JM. High-resolution structural insights on the sugar-recognition and fusion tag properties of a versatile β-trefoil lectin domain from the mushroom Laetiporus sulphureus. Glycobiology. 2011; 21(10): 1349-1361.

Davoli P, Mucci A, Schenetti L, Weber RW. Laetiporic acids, a family of non-carotenoid polyene pigments from fruit-bodies and liquid cultures of Laetiporus sulphureus (Polyporales, Fungi). Phytochemistry. 2005; 66(7): 817-823.

Ershova EI, Tikhonova OV, Lur´e LM, Efremenkova OV, Kamzolkina OV, Dudnik IV. [Antimicrobial activity of Laetiporus sulphureus strains grown in submerged culture]. Antibiot Khimioter. 2003; 48(1): 18-22. Russian.

Fan QY, Yin X, Li ZH, Li Y, Liu JK, Feng T, Zhao BH. Mycophenolic acid derivatives from cultures of the mushroom Laetiporus sulphureu. Chin J Nat Med. 2014; 12(9): 685-688.

He JB, Tao J, Miao XS, Bu W, Zhang S, Dong ZJ, Li ZH, Feng T, Liu JK. Seven new drimane-type sesquiterpenoids from cultures of fungus Laetiporus sulphureus. Fitoterapia. 2015a; 102: 1-6.

He JB, Tao J, Miao XS, Feng YP, Bu W, Dong ZJ, Li ZH, Feng T, Liu JK. Two new illudin type sesquiterpenoids from cultures of Phellinus tuberculosus and Laetiporus sulphureus. J Asian Nat Prod Res. 2015b; 17(11): 1054-1058.

Hong MR, Kim YS, Joo AR, Lee JK, Kim YS, Oh DK. Purification and characterization of a thermostable beta-1,3-1,4-glucanase from Laetiporus sulphureus var. miniatus. J Microbiol Biotechnol. 2009; 19(8): 818-822.

Hwang HS, Lee SH, Baek YM, Kim SW, Jeong YK, Yun JW. Production of extracellular polysaccharides by submerged mycelial culture of Laetiporus sulphureus var. miniatus and their insulinotropic properties. Appl Microbiol Biotechnol. 2008; 78(3): 419-429.

Jayasooriya RG, Kang CH, Seo MJ, Choi YH, Jeong YK, Kim GY. Exopolysaccharide of Laetiporus sulphureus var. miniatus downregulates LPS-induced production of NO, PGE₂, and TNF-α in BV2 microglia cells via suppression of the NF-κB pathway. Food Chem Toxicol. 2011; 49(11): 2758-2764.

Karaman M, Jovin E, Malbasa R, Matavuly M, Popović M. Medicinal and edible lignicolous fungi as natural sources of antioxidative and antibacterial agents. Phytother Res. 2010; 24(10): 1473-1481.

Lear MJ, Simon O, Foley TL, Burkart MD, Baiga TJ, Noel JP, DiPasquale AG, Rheingold AL, La Clair JJ. Laetirobin from the parasitic growth of Laetiporus sulphureus on Robinia pseudoacacia. J Nat Prod. 2009; 72(11): 1980-1987.

Lee JW, Park JY, Kwon M, Choi IG. Purification and characterization of a thermostable xylanase from the brown-rot fungus Laetiporus sulphureus. J Biosci Bioeng. 2009; 107(1): 33-37.

León F, Quintana J, Rivera A, Estévez F, Bermejo J. Lanostanoid triterpenes from Laetiporus sulphureus and apoptosis induction on HL-60 human myeloid leukemia cells. J Nat Prod. 2004; 67(12): 2008-2011.

Mancheño JM, Tateno H, Sher D, Goldstein IJ. Laetiporus sulphureus lectin and aerolysin protein family. Adv Exp Med Biol. 2010; 677: 67-80.

Mancheño JM, Tateno H, Goldstein IJ, Hermoso JA. Crystallization and preliminary crystallographic analysis of a novel haemolytic lectin from the mushroom Laetiporus sulphureus. Acta Crystallogr D Biol Crystallogr. 2004; 60(Pt 6): 1139-1141.

Mancheño JM, Tateno H, Goldstein IJ, Martínez-Ripoll M, Hermoso JA. Structural analysis of the Laetiporus sulphureus hemolytic pore-forming lectin in complex with sugars. J Biol Chem. 2005; 280(17): 17251-17259.

Olennikov DN, Agafonova SV, Borovskiĭ GB, Penzina TA, Rokhin AV. [Alkali-soluble polysaccharides of Laetiporus sulphureus (Bull.: Fr.) Murr fruit bodies]. Prikl Biokhim Mikrobiol. 2009a; 45(6): 693-697. Russian.

Olennikov DN, Agafonova SV, Borovskiĭ GB, Penzina TA, Rokhin AV. [Water-soluble endopolysaccharides from the fruiting bodies of Laetiporus sulphureus (Bull.: Fr.) Murr]. Prikl Biokhim Mikrobiol. 2009b; 45(5): 597-605. Russian.

Olennikov DN, Agafonova SV, Nazarova AV, Borovskii GB, Penzina TA. Organic acids and carbohydrates from Laetiporus sulphureus fruiting bodies. Chem Natural Comp. 2008; 44: 762-763.

Ota Y, Hattori T, Banik MT, Hagedorn G, Sotome K, Tokuda S, Abe Y. The genus Laetiporus (Basidiomycota, Polyporales) in East Asia. Mycol Res. 2009; 113(Pt 11): 1283-1300.

Petrović J, Glamočlija J, Stojković DS, Ćirić A, Nikolić M, Bukvički D, Guerzoni ME, Soković MD. Laetiporus sulphureus, edible mushroom from Serbia: investigation on volatile compounds, in vitro antimicrobial activity and in situ control of Aspergillus flavus in tomato paste. Food Chem Toxicol. 2013; 59: 297-302.

Pleszczyńska M, Wiater A, Siwulski M, Szczodrak J. Successful large-scale production of fruiting bodies of Laetiporus sulphureus (Bull.: Fr.) Murrill on an artificial substrate. World J Microbiol Biotechnol. 2013; 29(4): 753-758.

Pleszczyńska M, Wiater A, Szczodrak J. Mutanase from Paenibacillus sp. MP-1 produced inductively by fungal α-1,3-glucan and its potential for the degradation of mutan and Streptococcus mutans biofilm. Biotechnol Lett. 2010;32:1699-1704.

Radic N, Injac R, Strukelj B. Sulphur tuft culinary-medicinal mushroom, Laetiporus sulphureus (Bull.: Fr.) Murrill (Aphyllophoromycetideae): bioactive compounds and pharmaceutical effects. Int J Med Mushrooms. 2009;11:103-116.

Rapior S, Konska G, Guillot J, Andary C, Bessiere JM. Volatile composition of Laetiporus sulphureus. Cryptogamie Mycologie, 2000; 21(1): 67-72.

Saba E, Son Y, Jeon BR, Kim SE, Lee IK, Yun BS, Rhee MH. Acetyl Eburicoic Acid from Laetiporus sulphureus var. miniatus Suppresses Inflammation in Murine Macrophage RAW 264.7 Cells. Mycobiology. 2015; 43(2): 131-136.

Seo MJ, Kang BW, Park JU, Kim MJ, Lee HH, Choi YH, Jeong YK. Biochemical characterization of the exopolysaccharide purified from Laetiporus sulphureus mycelia. J Microbiol Biotechnol. 2011; 21(12): 1287-1293.

Sinanoglou VJ, Zoumpoulakis P, Heropoulos G, Proestos C, Ćirić A, Petrovic J, Glamoclija J, Sokovic M. Lipid and fatty acid profile of the edible fungus Laetiporus sulphurous. Antifungal and antibacterial properties. J Food Sci Technol. 2015; 52(6): 3264-3272.

Tateno H, Goldstein IJ. Molecular cloning, expression, and characterization of novel hemolytic lectins from the mushroom Laetiporus sulphureus, which show homology to bacterial toxins. J Biol Chem. 2003; 278(42): 40455-40463.

Wang J, Sun W, Luo H, He H, Deng W, Zou K, Liu C, Song J, Huang W. Protective Effect of Eburicoic Acid of the Chicken of the Woods Mushroom, Laetiporus sulphureus (Higher Basidiomycetes), Against Gastric Ulcers in Mice. Int J Med Mushrooms. 2015; 17(7): 619-626.

Wang J, Zhang P, He H, Se X, Sun W, Chen B, Zhang L, Yan X, Zou K. Eburicoic acid from Laetiporus sulphureus (Bull.:Fr.) Murrill attenuates inflammatory responses through inhibiting LPS-induced activation of PI3K/Akt/mTOR/NF-κB pathways in RAW264.7 cells. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 2017; 390(8): 845-856.

Wiater A, Paduch R, Pleszczyńska M, Próchniak K, Choma A, Kandefer-Szerszeń M, Szczodrak J. α-(1 → 3)-D-glucans from fruiting bodies of selected macromycetes fungi and the biological activity of their carboxymethylated products. Biotechnol Lett. 2011; 33(4): 787-795.

Yin X, Li ZH, Li Y, Feng T, Liu JK. Four lanostane-type triterpenes from the fruiting bodies of mushroom Laetiporus sulphureus var. miniatus. J Asian Nat Prod Res. 2015; 17(8): 793-799.

Yoshikawa K, Bando S, Arihara S, Matsumura E, Katayama S. A benzofuran glycoside and an acetylenic acid from the fungus Laetiporus sulphureus var. miniatus. Chem Pharm Bull (Tokyo). 2001; 49(3): 327-329.

Zhao H, Lan Y, Liu H, Zhu Y, Liu W, Zhang J, Jia L. Antioxidant and Hepatoprotective Activities of Polysaccharides from Spent Mushroom Substrates (Laetiporus sulphureus) in Acute Alcohol-Induced Mice. Oxid Med Cell Longev. 2017; 2017: 5863523.